Сделай Сам Свою Работу на 5

Приготовление моющего раствора для предстерилизационной очистки





Наименование компонентов   Количество компонентов для приготовления 1 дм' мoющего раствора   Применение  
CMC "Биолот" Вода,см3   3 997   Для механизирован­ной очистки (струй­ный метод, ершева-ние)  
CMC "Биолот",г Вода,см3   1, 998,5   При механизирован­ной очистке ротацион­ным методом  
CMC' "Биолот",г Вода,см3     При ручной очистке  
Р-р Н2О2 см3 С'МС': " Прогресс" "Айна", "Астра", "Лотос",г Вода.см3   5 978   При механизирован­ной (все методы) и ручной очистке  
CMC "Лотос",г Вода,см3   5 995   При использовании ультразвука  

 


Механизированная очистка осуществляется струйным, ротационным методами и с применением ультразвука в спе­циальных моющих растворах, рекомендуемых ОСТ 42-21-2—85. Механизированный способ предстерилизационной очистки применяется в крупных централизованных стерилизационных отделениях (ЦСО). При проведении предстерилиза­ционной очистки персонал в обязательном порядке использу­ет средства защиты - резиновые перчатки, фартуки и т.д.

Методика и последовательность проведения предстери­лизационной очистки представлены в табл. 2.



Приготовление различных моющих растворов для пред­стерилизационной очистки описано в табл. 3.

Для предстерилизационной очистки допускается приме­нение медицинской перекиси водорода. Приведенные коли­чества перекиси водорода для приготовления моющего рас­твора рассчитаны для раствора с концентрацией 27,5%. При использовании коррозионно-нестойких металлических инстру­ментов последние после использования их в ходе операции или манипуляции, с последующей дезинфекцией, могут быть погружены в 1% раствор бензоната натрия (ингибитор кор­розии) при температуре 20 °С. Время экспозиции 60 мин. Пос­ле этого инструмент ополаскивается проточной водой в тече­ние 30 с. В случае необходимости инструмент может оста­ваться в растворе ингибитора коррозии до 7 ч.

Для контроля качества предстерилизационной очистки применяются две методики:

1. Контроль наличия остатков CMC производитсяприпомощи фенолфталеиновой пробы. На предмет наносится 1—2 капли 1% спиртового раствора фенолфталеина. Появле­ние розового окрашивания свидетельствует о наличии остат­ков CMC.



2. Контроль наличия остатков крови. Наиболее распрос­траненной является азопирамовая проба. Исследуемое изде­лие обрабатывается рабочим раствором (азопирам с 3% рас­твором перекиси водорода в соотношении 1:1). При наличии остатков крови появляется сиреневое окрашивание. Реже ис­пользуется бензидиновая проба: на предмет наносится 2—3 капли 1% раствора солянокислого бензидина и затем 2—3


капли 3% paствopa перекиси водорода. Появление сине-зеле­ного окрашивания свидетельствует о положительном резуль­тате.

При положительных результатах перечисленных проб инструментарий и материал должны вновь пройти полный цикл предстерилизационной обработки, а в некоторых случаях и дезинфекцию.

Стерилизация - полное освобождение какого-либо вещества или предмета от вегетативных форм и спор микро­организмов путем воздействия на них физических и химичес­ких факторов. В хирургии стерилизуют все предметы и изде­лия (аппараты, приборы, инструментарий, материал и т.д.), г соприкасающиеся в процессе их использования с раневой по­верхностью, слизистыми оболочками, биологическими жидкостями, и препараты, предназначенные для парентерально­го введения, а также препараты для перорального введения детям раннего возраста и т.д.

К применяемым для стерилизации методам и средствам предъявляются строгие требования. Они должны обладать высокой эффективностью и одновременно не повреждать сте­рилизуемых предметов и материалов. Существуют физичес­кие и химические методы стерилизации:



физические Химические:

- паровой, - газовый, - горячевоздушный, - растворами - радиационный, химических препаратов - инфракрасное, ультрафиолетовое излучение

Наибольшее применение в хирургической практике на-шли методы термической стерилизации - паровой и горяче­воздушный. Воздействие температуры свыше 56 °С приводит к денатурации белка живых организмов. При более высоких температурах происходит гибель или существенное наруше­ние жизнедеятельности многих микроорганизмов. Температура 120 °С убивает большинство микроорганизмов. При температуре 120 °С и выше погибают спорообразующие формы микроорганизмов.

Паровой метод стерилизации.Использование пара под


давлением является основным методом термической стерили­зации, применяемым на сегодняшний день в медицинской прак­тике. При этом стерилизующим агентом является водяной на­сыщенный пар под давлением от 0,5 до 2,0 кгс/см2 и темпера­туре 110-132 °С при экспозиции 15-60 мин. Давление пара и температура находятся к корреляционной зависимости. Со­ответственно с достигаемой температурой изменяется и время экспозиции. Противомикробное действие этого метода обус­ловлено непосредственным воздействием на микробные клет­ки горячего пара при активном проникновении его между стерилизующимися объектами и внутрь капиллярно-порис­тых материалов. Недостатком парового метода является ув­лажнение стерилизуемых изделий при конденсации пара. Это может привести к коррозионным изменениям нестойких ме­таллов, и, кроме того, ухудшает условия хранения простерилизованных объектов, повышая возможность их вторичного обсеменения микробной флорой.

На практике используются два режима стерилизации:

РЕЖИМ I (Давление 2 кгс/см2, температура 132 °С, эк­спозиция 20 мин).

Применяется для стерилизации изделий из стекла, коррозионно-стойкого металла, текстильных изделий.

РЕЖИМ II (Давление 1,1 кгс/см2, температура 120 °С, экспозиция 45 мин).

Применяется для стерилизации изделий из тонкой рези­ны и пластмасс.

Все материалы, приготовленные для стерилизации дан­ным методом, предварительно упаковывают в пакеты из спе­циальной плотной бумаги, стерилизационные коробки (биксы), мешки из хлопчатобумажной ткани или другую специ­альную упаковку.

ВИДЫ УКЛАДКИ БИКСОВ:

1. Универсальная - в бикс помещается материал, предна­значенный для одной небольшой типичной операции (аппендэктомия, грыжесечение и т.д.).

2. Целенаправленная - в бикс закладывают необходимый набор инструментов, перевязочного материала и операцион­ного белья, предназначенного для конкретной операции


(пневмонэктомия, резекция желудка и т.д.).

3. Видовая - в бикс укладывается необходимый набор перевязочного материала или белья одного вида (бикс с хала­тами, бикс с салфетками и т.д.).

Перевязочный материал и операционное белье, подго­товленные к стерилизации, размещают в биксах в порядке, Принятом в данном лечебном учреждении. На дно бикса укла­дывают простыню, концы которой находятся снаружи. Пере­вязочный материал укладываю по секторам, неплотно, вертикально пачками или пакетами. Внутрь бикса помещают ин­дикаторы стерильности, края простыни заворачивают, крыш­ку бикса закрывают, оставляя открытыми отверстия для про­хождения пара. На крышке бикса прикрепляют бирку, на ко­торой указывается название материала, дата стерилизации, фамилия лица ее проводившего, и номер отделения.

Процесс стерилизации паром под давлением подразделяется на 4 периода:

- нагревание, - уравновешивание,

- уничтожение,

- охлаждение.

Период нагревания продолжается от момента включе­ния стерилизатора до достижения необходимого давления и температуры, согласно показаниям манометра, термометра.

Период уравновешивания - от момента достижения не­обходимой температуры до создания одинаковой температу­ры во всем стерилизуемом материале. Продолжительность это-го периода зависит от типа стерилизатора, вида и числа сте­рилизуемых изделий, режима стерилизации и определена ин­струкцией к используемому стерилизатору.

Период уничтожения - период гибели микроорганизмов вследствие воздействия горячего пара. Длительность его оп­ределяется по инструкции работы стерилизатора.

Период охлаждения продолжается от момента выключе­ния стерилизатора до снижения температуры и давления до уровня, позволяющего безопасно открыть его крышку. Обыч­но это 60 °С. При несоблюдении правил эксплуатации стери­лизатора относительно температурного режима, в периоде


охлаждения, в результате быстрого понижения температуры на стерилизуемом материале конденсируются капельки воды, что приводит к увлажнению белья.Влажное белье считается нестерильным! Сумма всех периодов стерилизации называет­ся стерилизационным циклом.

Горячевоздушный (сухожаровой) метод стерилизации -один из наиболее эффективных; Используется поток сухого горячего воздуха, при этом не происходит увлажнения стери­лизуемого материала, что является одним из его преимуществ. Однако он не лишен недостатков: сухой горячий воздух высу­шивает оболочку микробной клетки, тем самым повышая ее устойчивость к высоким температурам. Поэтому при исполь­зовании данного метода особенно важен контроль темпера­турного режима.

Применяются два режима горячевоздушной стерилиза­ции:

РЕЖИМ I: температура 180 °С при экспозиции 60 мин.

РЕЖИМ II: температура 160 °С при экспозиции 150 мин.

Горячевоздушный метод используется дня стерилизации термостойких материалов, в том числе предметов из коррозионно-нестойких металлов, стекла, фарфора, некоторых раз­новидностей термоустойчивой пластмассы (например сили­кона). Материалы и предметы, подлежащие стерилизации горячевоздушным методом, укладывают в биксы, металличес­кие контейнеры или пакеты из специальной бумаги. Нельзя подвергать стерилизации данным методом текстильные изде­лия из-за понижения их прочности или даже обугливания.

Весь рабочий цикл стерилизации продолжается 2—4 ч, в зависимости от типа стерилизационной камеры и количества стерилизуемого материала.

Последовательность работы воздушных стерилизаторов:

- загрузка материала при температуре 50—60 °С,

- нагревание,

- собственно стерилизация (от момента достижения до­лжной температуры до окончания времени экспозиции),

- охлаждение,

- разгрузка материала при температуре 20—30 °С.

Для контроля качества стерилизации паром под ­


давлением и горячевоздушным методом используют:

1. Бактериологический метод (взятие посевов). Применяется для ретроспективной оценки бактериальной стерильности, из-за длительности проведения методики (3—5 дней и бо­лее).

2. Технические методы(^периодическая проверка фун­кционирования термометров и манометров).

3. Термический контроль. Основан на свойстве ряда ве­ществ менять свой цвет и плавиться при строго определенной температуре.

Для контроля стерилизации паром под давлением ис­пользуются пробы с порошкообразными индикаторами, тем­пературная точка плавления которых выше 110 °С: антипи­рин (113 °С), антифибрин (115 °С), бензойная кислота (110—119 °С), мочевина (132 °С) и т.д.

Для контроля качества горячевоздушной стерилизации также используют пробы с порошкообразными индикатора­ми, температурная точка плавления которых 160 °С и выше: тиомочевина и сахароза (180 °С), янтарная кислота (180— 192 °С), пилокарпина гидрохлорид (200 °С), аскорбиновая кислота (187— 190 °С) и т.д.

Наиболее современным и достаточно эффективным ме­тодом контроля термических методов стерилизации является использование цветных индикаторных ленточек или полосок, пропитанных раствором специальных веществ, которые при достижении определенной температуры изменяют свой цвет.

Радиационный метод стерилизации. Метод основан на губительном воздействии различных видов ионизирующего излучения на микроорганизмы. Для стерилизации применя­ют: х-лучи, гамма-излучение, бета-частицы, нейтроны, протоны и другие виды ионизирующего излучения. Разница в вы­мываемых ими биологических изменениях почти незаметна. Гамма-лучи из всех видов излучений обладают наибольшей Проникающей способностью и поэтому используются чаще других. В качестве источников гамма-лучей применяют кобальт-60 и цезий-137. Бактерицидный эффект ионизирующе­го излучения является результатом воздействияна метаболические процессы в клетке. Каждый микроорганизм содержит


некоторое количество чувствительных "мишеней", разруше­ния одной из которых достаточно для нарушения жизнеспо­собности всего микроорганизма. Разрушение осуществляется путем возникновения возбуждения и распада молекул при воз­действии частиц ионизирующего излучения, что ведет к нару­шению хода обменных процессов, ферментативной деятель­ности клетки и образованию токсических аномальных про­дуктов обмена. При облучении прежде всего разрушается структура ДНК, в результате чего нарушается деятельность клеточного ядра. Важной особенностью ионизирующего из­лучения является то, что оно не вызывает немедленной гибели микробной клетки, хотя поражение является смертельным.

Стерилизующая доза ионизирующего излучения равна 2,5 Мрад. Этот вид стерилизации применяется в основном в медицинской промышленности для стерилизации одноразо­вых изделий в массовом количестве.

Метод стерилизации ультрафиолетовыми и инфракрас­ными лучами. Большое практическое значение имеет бактери­цидный эффект ультрафиолетовой радиации в пределах дли­ны волны 2000-4000 А. Максимум бактерицидного действия приходится на область 2540-2670 А. Бактерицидным действи­ем обладают только те лучи, которые абсорбируются протоп­лазмой. Механизм действия УФО близок к ионизирующему излучению, т.е. воздействие оказывается путем передачи до­полнительной энергии атомам, после чего последние перехо­дят в возбужденное состояние, при котором электроны могут оказаться выбитыми ю своей орбиты. Наиболее легко иони­зируются большие молекулы, по размерам равные молекуле протеина. Первоначальное действие заключается в том, что задерживается дыхание клетки и образование ДНК, в связи с чем наступает ее лизис. Основной реакцией, вероятно, являет­ся окисление сульфгидрильных групп, что вызывает инактивацию нуклеотидазы. Наибольшей устойчивостью к УФО об­ладают споры, т.к. их оболочка светонепроницаема. Дейст­вие УФО oгрaничивaeтcя только поверхностью облучаемого предмета, поэтому оно, несмотря на выраженный бактери­цидный эффект, используется в основном для дезинфекции воздуха помещений, а также для стерилизации некоторых


ин­струментов и материалов.

Инфракрасное излучение обладает более выраженным эффектом, чем УФО.

Газовый метод стерилизации. Стерилизация окисью эти­лена или смесью газов "ОБ" (окись этилена и бромистый ме­тил) производится в стационарном газовом стерилизаторе. Режим стерилизации зависит от характера стерилизуемого материала и определяется в соответствии с ОСТ 42-21-2—85 ,(табл. 4).

Таблица 4

Режимы стерилизации окисью этилена и смесью газов "ОБ"

Стерилизующий агент   Доза газа Т°С Экспо- Применяемость  
мг кгс мм рт. зиция,  
дм3 см2 ст. мин  
Смесь газов "ОБ"(окись эти­лена с бромис­тым метилом в соотношении 1:25 повесу, соответственно)   2000 0,75 549 35 240 Оптика, кардио-стимуляторы  
200 0,81 595 55 240 Полимерные материалы, резина, стекло, металл  
2000 0,81 595 55 360 Пластмассовые магазины к сшивающим аппаратам  
Окись этилена Смесь газов "ОБ"   1200 0,68 498 не 960 Полимерные менее материалы, 18 стекло, металл 2000 0,70 510 не 960 Полимерные менее материалы, 18 стекло, металл  

 

Примечание. Относительная влажность не менее 80%.


Стерилизация производится в упаковке из двухслойной полиэтиленовой пленки, пергамента, в мешочной пропитан­ной бумаге и мешочной влагопрочной бумаге. Изделия после предстерилизационной очистки высушивают и в разобран­ном виде упаковывают. По окончании стерилизации по дан­ной методике изделия можно использовать только после их выдержки в хорошо проветриваемом помещении при скорос­ти движения воздуха не менее 20 см/с в течение: 1 суток - для изделий из стекла и металла; 5-13 суток - для изделий и;

полимерных материалов (резины, пластмассы), имеющих крат­ковременный контакт с раневой поверхностью (до 30 мин); 14 суток - для всех изделий, имеющих длительный контакт (свы­ше 30 мин) со слизистыми оболочками, кровью, тканями че­ловеческого организма; 21 сутки - для изделий из полимерных материалов, имеющих длительный контакт (свыше 30 мин), при использовании в детской практике. После стерилизации материал в упаковке может сохранять свою стерильность от 1 года до 5 лет.

Метод стерилизации водными парами формальдегида (16% раствор). Подвергаются изделия из резины, стекла, полимер­ных материалов, металла. Изделия перед обработкой водны­ми парами формальдегида упаковывают в специальные паке­ты из полиэтилена или пергамента. Цикл стерилизации про­водится в параформалиновом стерилизаторе при температуре 75 °С и относительной влажности 96° в течение 300 мин. Для нейтрализации формалина применяется распыление 23-25° о раствора аммиака в количестве 90 см3 в течение 60 мин. После стерилизации изделия в упаковке сохраняют свою стериль­ность в течение 5 лет.

Реже используется стерилизация сухими парами формаль­дегида. Цистоскопы, бронхоскопы, ларингоскопы и другие предметы размещают в подвешенном состоянии, либо на пол­ках в специальной камере с притертой крышкой. На дно ка­меры помещают таблетки формалина, обладающего большой способностью к испарению. Стерилизация происходит при температуре не менее 20 °С в течение 24 ч. Для поддержания низкой влажности в камеру помещают мешочек с кристалли­ческим хлоридом кальция. После стерилизации предметы или


приборы промывают стерильной дистиллированной водой.

Метод стерилизации растворами химических препаратов. Для химической стерилизации предметов из полимерных ма­териалов, резины и стекла, а также коррозионно-стойкого металла используют перекись водорода, соединения на осно­ве перекиси водорода, альдегиды. ОСТ 42-21-2 85 предус­матривает использование двух химических препаратов: пере­кись водорода (6% раствор) и дезоксон-1 (1% раствор). Сте­рилизация осуществляется в закрытых емкостях из стекла, пластмассы, а также эмалированной посуде при условии пол­ного погружения материала в раствор. При использовании 6% раствора перекиси водорода, при комнатной температуре, время экспозиции составляет 360 мин, при температуре 50 °С - 180 мин. Температура раствора в процессе стерилизации не поддерживается. 1% раствор дезоксон-1, при комнатной тем­пературе, стерилизует материал в течение 45 мин. Раствор перекиси водорода может быть использован в течение 7 суток со дня приготовления, а дезоксон-1 - в течение 24 ч.Повтор­ное использование растворов запрещено!

После стерилизации материал, перед его употреблением, дважды прополаскивают в стерильной дистиллированной воде. Стерилизация осуществляется в условиях, соответству­ющих требованиям к "чистым операционным". Первому? в виде 2,4-4,8% раствора может использоваться для стерилиза­ции различных изделий хирургического назначения (шовный материал, инструментарий, дренажные трубки и т.д.) и даже эндоскопической аппаратуры. Однако существующими нор­мативными актами его применение не оговорено.

Химическая стерилизация является наиболее оптималь­ной для обработки режущего инструментария, выполненного из коррозионно-стойкого металла.

 








Не нашли, что искали? Воспользуйтесь поиском по сайту:



©2015 - 2024 stydopedia.ru Все материалы защищены законодательством РФ.