Исследуемый материал, бланки направления на исследование, выдача результатов исследования

Необходимо проводить исследование только при наличии письменного направления на анализ, подписанного врачом.

Необходимо требовать, чтобы бланки направлений на исследование доставлялись отдельно от клинических проб. Если бланки направлений были контаминированы пробами биологического материала, их следует стерилизовать в сухожаровом шкафу. Необходимо требовать правильного и четкого заполнения бланков направления на исследование и правильной маркировки проб. Нельзя проводить исследование доставленного материала, если он не имеет маркировки.

Необходимо оценивать качество проб мокроты. Если в лабораторию доставлена слюна, необходимо сообщить об этом врачу, направившему пробу на анализ. Ответ может быть сформулирован следующим образом: поступившая проба похожа на слюну. Рекомендуется повторить сбор мокроты.

Необходимо сразу выбрасывать протекающие или поврежденные контейнеры для клинического материала, предварительно обезвредив их автоклавированием. Необходимо сообщить об этом врачу, направившему пробу на анализ.

Ответ о результатах исследования следует передавать в медицинское учреждение или непосредственно врачу, направившему материал на исследование. Для сокращения затрат времени на оформление ответов можно использовать резиновые штампы со стандартными формулировками.

Гомогенизация и деконтаминация проб, посев

При проведении бактериологических исследований на туберкулез необходимо ежемесячно контролировать уровень контаминации проб. Удовлетворительным считается показатель контаминации 2 — 5% от числа засеянных пробирок. Если число контаминированных проб менее 2%, это может свидетельствовать о чрезмерно жестком режиме предпосевной обработки проб (слишком высокая концентрация деконтаминирующего раствора и/или слишком продолжительная обработка образца деконтаминирующим раствором), а также о слишком высокой концентрации малахитового зеленого в яичной среде, приводящих к гибели слишком большого количества микобактерий. Если количество контаминированных проб постоянно превышает 5%, это может быть обусловлено задержкой транспортировки и/или плохими условиями хранения образца, неполным разжижением мокроты, вызванном нарушением режима обработки (слишком низкая концентрация деконтаминирующего раствора, недостаточное время обработки образца деконтаминирующим раствором), недостатками в приготовлении питательных сред (неудовлетворительный режим автоклавирования растворов, посуды, пробок и т.д.), наличием загрязняющей микрофлоры в лаборатории и/или в термостате). В этих случаях необходимо проанализировать причины слишком высокого или низкого показателя контаминации с тем, чтобы принять меры.

Необходимо избегать перекрестного загрязнения культур, используя в работе индивидуальные пипетки для каждой пробы.

Бактериоскопическое исследование мазков, окрашенных по Ziehl-Neelsen

Контроль качества осуществляется на всех технологических этапах микроскопического исследования:

- оценка качества поступающих проб;

- контроль за соблюдением рецептуры и методики приготовления реагентов и красителей;

- правила и сроки хранения реагентов и красителей;

- наблюдение за неукоснительным соблюдением методических приемов при: приготовлении мазков и окраске мазков и проведении микроскопического исследования (включая качество предметных стекол);

- регулярный контроль качества используемых химических реактивов и сроков хранения, исправности микроскопа;

- периодический контроль результатов бактериоскопии;

- проверка правильности учета и регистрации результатов;

- микроскопирование положительных и отрицательных контрольных образцов;

- своевременность и точность передачи результатов в учреждение, направившее материал для исследования.

При окраске мазков не следует помещать на штатив («рельсы») и окрашивать одновременно более 12 стекол. Соприкосновение стекол боковыми краями может привести к переносу краски и микобактерий с одного стекла на соседние.

В число исследуемых мазков, подлежащих окрашиванию, необходимо ежедневно включать контрольные неокрашенные заведомо положительные и отрицательные мазки. В начале микроскопируют контрольные мазки, затем – мазки от больных.

В процессе окраски мазков при их промывании следует пользоваться дистиллированной водой, не следует пользоваться резиновыми трубками и наконечниками. В окружающей среде и водопроводной воде может находиться большое количество кислотоустойчивых сапрофитов, которые легко размножаются на резиновых поверхностях в условиях повышенной влажности. Они могут попасть на препарат и обусловить ложноположительные результаты анализа.

Окрашенные для исследования мазки непригодны, если при окраске карболовым фуксином:

- в положительном контрольном мазке микобактерии не окрасились в красный цвет;

- в отрицательном контрольном мазке после обесцвечивания видны красные клетки;

- не произошло достаточного обесцвечивания фона.

Получение положительных результатов при исследовании нескольких последовательных препаратов требует тщательного анализа, так как в этих случаях может иметь место контаминация препаратов во время их приготовления, окраски или микроскопировании.

По окончании микроскопического исследования необходимо удалить с препарата иммерсионное масло с помощью ксилола, спиртоэфирной смеси или спирта, поместить препараты в отдельные коробки для положительных и отрицательных мазков, где они сохраняются для последующего контроля качества или перепроверки результатов микроскопии. Не следует очищать стекла слишком энергично, чтобы не повредить препарат и не удалить с него краску.

Выдача ответов о результатах бактериоскопии должна быть произведена в течение 24 часов с момента получения пробы.

Необходимо еженедельно и ежемесячно обобщать и анализировать полученные данные для определения процента положительных результатов и, по возможности, определять причины любых резких отклонений от средних показателей. При получении в процессе микроскопии подряд нескольких положительных результатов необходимо внимательно проанализировать причины этого.

Для осуществления внутреннего контроля качества микроскопии в настоящее время рекомендуется систематический отбор мазков, как положительных, так и отрицательных, для повторного исследования вторым лицом, которое не должно знать результаты первого исследования (исследование слепым методом).

Определение лекарственной чувствительности микобактерий

Для определения лекарственной чувствительности микобактерий первостепенное значение имеет использование качественных химически чистых субстанций противотуберкулезных препаратов, используемых для приготовления сред.

Для постановки теста и учета результатов принципиально важно следовать стандартной методике, регламентирующей все технологические этапы исследования: приготовление разведений противотуберкулезных препаратов, приготовление и режим свертывания питательной среды, технику приготовления суспензии микобактерий, объем среды, вносимый в пробирку и др.

Идентификация микобактерий

Для исключения ошибок, связанных с оценкой морфологии колоний микобактерий, необходимо, чтобы пробирки с посевами оценивались двумя опытными работниками независимо друг от друга. Микроскопия по Ziehl-Neelsen мазков из выросших колоний микобактерий обязательно включается в комплекс тестов для идентификации.

Идентификация микобактерий проводится на основании результатов комплекса культуральных и биохимических тестов.

Необходимо контролировать правильность постановки биохимических тестов по результатам положительных и отрицательных контролей.

Улучшение качества

Улучшение качества – это процесс постоянного анализа всех компонентов работы бактериологической лаборатории для улучшения эффективности и достоверности использования результатов лабораторных исследований. Для осуществления контроля качества необходимо ежедневно и ежемесячно анализировать полученные данные для определения процента положительных результатов и выявления допущенных ошибок. Для этого необходим постоянный мониторинг работы лаборатории, выявление имеющихся дефектов и незамедлительные ответные действия, предупреждающие повторное возникновение аналогичных проблем. Лаборатории среднего уровня должны осуществлять контроль деятельности периферийных лабораторий.

Нередко многие проблемы удается решить только при непосредственном посещении лаборатории куратором. Инспекторский контроль (кураторские визиты) имеет целью проверку деятельности лабораторий и достоверности получаемых результатов лабораторных исследований на туберкулез при ее посещении представителями курирующей лаборатории и требует координации действий между инспектирующей и посещаемой лабораториями. Такие контрольные посещения должны осуществлять наиболее опытные лабораторные работники. План проведения кураторских визитов и основные разделы работы лабораторий, подлежащие проверке, определяются заранее.

Во время инспекторских визитов куратором могут быть предприняты следующие действия.

- Ознакомление с соблюдением сотрудниками лаборатории общего санитарно-гигиенического режима и правил техники безопасности.

- Проверка наличия и доступности письменных инструкций с детальным описанием всех манипуляций и методик.

- Проверка тщательности регистрации в соответствующих журналах фактов работы на оборудовании и его сервисного обслуживания.

- Оценка частоты получения клинических проб в неудовлетворительном состоянии. Если такие пробы регулярно поступают из одних и тех же медицинских учреждений, необходимо расследование причин.

- Проверка наличия на всех красителях, реагентах и питательных средах этикеток с указанием порядка использования и срока годности; проверка срока годности используемых материалов.

- Проверка регулярности использования положительных и отрицательных контролей при проведении бактериоскопических исследований, при выделении культур и в процессе идентификации микобактерий.

- Анализ процента положительных проб (например, за каждый месяц) с целью выявления существенных отклонений от средних показателей.

- Проверка наличия коллекции положительных и отрицательных препаратов для сравнительного исследования.

- Отбор необходимого числа препаратов для контрольного исследования.

Очень важно наладить обратную связь куратора с сотрудниками лаборатории; следует без промедления давать рекомендации, чтобы персонал мог сразу же внести коррективы в работу. Для улучшения качества работы очень полезно проводить обучение персонала лаборатории.

Не нашли, что искали? Воспользуйтесь поиском по сайту: