Мониторизация во время анестезии

Несмотря на то, что изофлуран достаточно надёжен, нет причин, чтобы не сделать мониторинг во время анестезии. Возможен точный контроль глубины наркоза если птица мониторизированна. Мониторинг птицам делается также, как и млекопитающим, хотя считается более сложным (Flammer, 1989).

Рефлексы

У птиц лучше контролировать рефлексы пальпебральный, роговичный, рефлекс восковицы, проколом/щипком пальцев, реакцией крыльев. Чем глубже наркоз, тем обычные рефлексы медленнее, и уменьшают интенсивность пока не исчезнут. Рефлексы пальца (рис. 4,26), восковицы и крыла исчезают в середине погружения в наркоз. Рефлекс роговицы обычно исчезает последним, и говорит о том, что птица находится в стадии глубого наркоза (Lawton, 1996а). Также должна учитываться сила сжатия челюсти: уменьшается в середине вхождения в наркоз.

Кровообращение

Считается, что кровопотерю птицы переносят легче, чем млекопитающие (Heard, 1997), но кровопотеря остаётся опасной. Количество крови, которое теряется во время хирургии, должно строго контролироваться (если необходимо, измеряя по тампонам), и должна быть сделана флюидотерапия, или даже переливание крови.

В срочной ситуации может быть использована кровь голубя, подходящая для боьшинства видов, но эта процедура рискованна, включая вирусные инфекции.

Очень точный вес птицы до и после операции, что помогает понять количество потерянной жидкости. Хотя есть и другие способы рассчитать необходимое количество жидкости, Sinn (1994) указывал, что нормальная суточная – это примерно 5% от веса тела в мл, но в случаях сильного обезвоживания может быть и 10% от веса в мл. Если суточная доза 5%, должны учитываться добавки.

Боль

Реакиция птицы на болевые стимулы во время хирургии – обычно это изменения дыхания, частоты сердцебиения, движения. Рекомендуется контролировать боль вов время анестезии и после. Анальгетики (особенно когда используются анестезийные фармаки с малой долей анальгетиков) позволяют более стабильное состояние во время наркоза и снижают риск хирургического шока.

В таблице 4,3 предлагается список анальгетических препаратов; см также Местная анестезия и обезболивание.

Электрокардиограмма

На рис. 4,28 - 4,32 показано оборудование для электрокардиограммы (ЭКГ) и установление электродов. По возможности рекомендуется использование сердечного монитора, хотя и возможно использование стетоскопа. Мониторы фундаментальны, когда используются фармаки такие, как Ксилазин например, чтобы предотвратить атривентрикулярную блокаду. Обычно электроды устанавливаются дистальных боковых предплюсне-плюсневой и карпальных суставах обоих крыльев (Burtnick Degernes. 1993), используя атравматические щипцы или «серебрянные иглы» (рис. 4,29 и 4,30). Контроль сердечной частоты эффективное дополнение для определения боли (рис. 4,31 и 4,32). Елси, например, какаду чувствует боль, его сердебиение увеличивается с 300 уд/мин до 700 уд/мин (Lawton. 1996a). Частота сердцебиения никогда должна падать до 120 уд/мин ( Doolen Jackson6 1991).

Также возможно использование аппаратов потока, как DOPLER, которые издают звук, сообщающий об изменениях давления артериального давления, и также могут быть использованы для мониторизации сердечной частоты и ритма (Heard. 1997). Некоторые производители выпускают клоакальный зонд, или, как альтернатива, можно использовать педиатрический зонд.

Мониторизация дыхания

Электронная мониторизация стала лучшим индикатором глубины и стабильности анестезии при отсуствии реакции на боль. Показатель дыхания важен; должен быть стабильным и постоянно мониторизированным во время анестезии (рис. 4,33 и 4,34). Изменение дыхания, особенно глубина дыхания с с поверхностного на глубокое, может говорить о том, что анестезия стала менее сильной или птица чувствует боль. В частности, когда птица входит в фазу глубокой анестезии, уменьшается частота и глубина. В зависимости от размера птицы, частота дыхания не должна уменьшаться менее, чем25-30дыханий в минуту (Doolen Jackson, 1991), при меньшей частоте возникает риск гиперкапнии. Частота дыхания любой анестезируемой птицы не должна быть меньше частоты её дыхания в спокойном состоянии (Coles. 1985).

Большинство мониторов дыхания работают через тепловые изменения между вдыхаемыми и выдыхаемыми газами. Это может усложнить контроль у птиц мелкого размера, особенно если скорость потока газов, которые транспорируются холодными, повышена. Сердечный чувствительный монитор (особенно с усилителем) улавливает движение дыхательных мускулов и заменяет другой способ оценки дыхания. Пульсометрия с клоакальным зондом подходит для контроля оксигинации крови и частоты дыхания. Использование VPPI (ВПВД) позволяет анестезии определённую и корректную скорость и глубину дыхания, исключая надобность в другой мониторизации. Особенно полезно у пациентов с нарушением дыхания.

Дыхание должно мониторизироваться аккуратно (включая из-за изменения движения грудины) до полного выхода птицы из наркоза. Если используется изофлуран, нужно контролировать птицу пока не восстановится достаточно, чтобы удерживаться на присаде ( или свободно), но под постоянным наблюдением. Если используются инъекционные фармаки, может быть необходимо удерживать птицу обездвиженной, чтобы избежать травм крыльев или головы, это особенно важно при использовании кетамина (одного или в комплексе).

Температура

Нужно поддерживать тепло во время вхождения, во время анестезии и в восстановительный период (рис. 4,35). Вполне возможно, что птицы во время анестезии не могут самостоятельно поддерживать температуру тела в адекватной форме (рис, 4,36 и 4,37) Больные птицы, которые пытаются самостоятельно поддержать температуру тела, могут спровоцировать гипогликемию из-за гипотермии. Гипотермия может спровоцировать сужение периферических сосудов, брадикардию, гипотензию, и при сильной – мерцание желудочков (Heard. 1997).

Анестезировать и ложить птицу на холодный операционный стол, может спровоцировать быстрое понижение температуры тела. Обычная средняя температура тела птицы 40-44 °С (Carter-Storm, 1988), у мелких птиц около 41 °С (Cooper, 1989). Неоходимое удаление оперения, преоперационное приготовление или использование спирта для хирургии в месте операции также продуцирует потерю тепла. Птицы во время операции должны ложиться на подстилку или Vetbed с подогревом, использование тёплых подушек и света также может помочь уменьшить потерю тепла, но очень важно избежать перегрева или ожогов. Также можно использовать воздушно-пузырчатую плёнку или разделительные листы, чтобы завернуть птицу и избежать ненужной потери тепла. Использование OpSite® (Smith & Nephew, рис. 4,38) позволяетдержать зону хирургии чистой вдолжной меребез удаления оперения. Холодные анестезийные газы понижают температуру тела птицы, но всё, что можно сделать, это постараться, чтобы хирургия длилась по возможности как можно меньше.

Клоакальная температура должна контролироваться во время анестезии (Doolen Jackson, 1991). Таким образом, должна производиться постоянная оценка уровня кровотечения во время анестезии, чтобы избежать хирургического шока и последующей гипотермии.

Анестезия в полевых условиях

В настоящее время при современной охоте на Ближнем Востоке, перевозится полевой госпиталь, полностью экипированный для соколов, которых можно анестезировать для медицинских вмешательств. На рис. 4,39 и 4,40 показана анестезия изофлураном.

Местная анестезия и обезболивание

Местная анестезия

Местная анестезия имеет лимитированное использование и не используется в обычной форме для анестезии птиц, в том числе из-за высокой чувствительности птиц к местным анастезикам. Очень легко передозировать, а высокие концентрации фармака очень токсичны. Ещё одна причина – это физическое обездвижение птицы, несмотря на использование местной анестезии. Физическое обездвижение может вызвать сильный стресс, в связи с этим местная анестезия не имеет преимуществ перед общей анестезией.

Лигнокаин

Если используется как местный анестезик, доза должна развестись до 0,2% или меньше.

Анальгезия

Мало изучено действие анальгетиков у птиц. Считается, что птицы имеют высокий болевой порог. Следующие фармаки, которые использовались у собак или у лошадей, были использованы у птиц без побочных действий (Ritchie Harrison, 1994). Для обновления информации советуется консультироваться по исследованиям Paul-Murphy (2006) и Marx (2006).

Анальгетики

АЦЕТИЛСАЛИЦИЛОВАЯ КИСЛОТА

-описание: таблетки аспирина, ацетилсалициловая кислота, 5г, 60г.

-использование: может быть эффективна в качестве анальгетика, жаропонижающего или противовоспалительного у некоторых видов

-дозирование: не существует рекомендаций, Murray (1994)рекомендует 30мг/200г веса без побочныз эффектов

БУПРЕНОРФИН ГИДЛОХЛОРИД

-описание: Vetergesic, гидрохлорид бупренорфина, 0,3 мг/мл.

-фармацевтический производитель: Animalcare Limited (Англия)

-использование: бупренорфин действенный анальгетик (опиатный), длительного действия и успокоительное, используется для уменьшения послеоперационной боли у собак, и также вероятно эффективен для контроля боли у птиц-пациентов

-дозирование: доза 0,1-0,5 мг/кг для послеоперационной анальгезии

-противопоказания: нельзя использовать у птиц с гепатонарушениями или проблемным дыханием, или же вместе с другими опиумными анальгетиками.

БУТОРФАНОЛ

-описание: инъекции TORBUGESIC: буторфанол тартрат, 10 мг/мл

инъекции торбутрол: буторфанол, 0,5 мг/мл

таблетки торбутрол: буторфанол, 1 мг, 5 мг, 10мг

-производитель: Willows Francis (Англия)

-использование: буторфанол опиоидный синтетический препарат, используемый как противокашлевое, для обезболивания и для успокоения. Использовался для брюшной боли, также может быть использован при постоперационной боли.

-дозирование: 1-2 мг/кг в/м у жако и 1-3 мг/кг в/м у amazonas de La Española (Paul- Murphy et al., 1999; Paul-Murrphy Ludders, 2001)

-противопоказания: должен быть использован осторожно у пациентов с гепатопатией.

ФЛУНИКСИН МЕГЛУМИН

-описание: Finadyne инъекционный: флуниксин меглумин, 10 мг/мл

Гранулы Finadyne:флуниксин меглумин, 250 мг/ упаковка 10 г

Таблетки Finadyne: флуниксин меглумин, 5 мг, 20 мг.

-производитель: Schering-Plough Animal Health (Англия)

-использование: флуниксин меглумин нестероидный, сильный, ненаркотический, с противовоспалительным действием, антиэндотоксический, жаропонижающий. Может быть полезен в случае шока или травмы, или как жаропонижающее при гипертермии.

-дозирование: 1-10 мг/кг

-противопоказания: может вызвать рвоту или диарею у некоторых птиц.

КАРПРОФЕН

-описание: Zenecarp инъекционный: карпрофен 50 мг/мл

-производитель: C-Vet Veterinary Products (Англия)

-использование: карпрофен нестероидный противоспалительный фармак, с обезболивающим и жаропонижающим действием.

-использование: 5-10 мг/кг в/м

-противопоказания: не должен быть использован у птиц с нарушениями работы почек, печени или сердца.

КЕТОПРОФЕН

-описание: Ketofen 10% инъекционный: кетопрофен, 100мг/мл

Ketifen таблетки 5 мг, 20 мг

-производитель: Rhone Merieux (Англия)

-использование: кетопрофен нестероидный, ненаркотический, противовоспалительный , сильный фармак с анальгетическим и жаропонижающим действием

-дозирование: 5-10мг/кг в/м

-противопоказания: не должен быть использован при нарушениях работы печени, почек или сердца

ИНДОМЕТАЦИН

-описание: Vetapharm Avi-gesic: индометацин, 0,2 мг/мл

-фармацевтический производитель: Vetapharm, Wagga Wagga (Австралия)

-использование: индометацин противоспалительный нестероидный с анальгетическим действием фармак для птиц

-дозирование: 0,2 мл/100 г в/в

МЕЛОКСИКАМ

-описание: Metacam® (meloxicam) суспензия, 1,5 мг/мл

Metacam® (meloxicam) инъекционный, 5 мг/мл

-фармацевтический производитель: Boehringer Ingelheim (Англия)

-использование: обезболивающее, жаропонижающее и противоспалительное. Может быть использован при послеоперационной боли, также при хронической боли, связанной с мышечно-скелетными нарушениями.

-дозирование: 0,2 – 0,5 мг/кг, суспензию можно разводить для использования у мелких птиц.

-противопоказания: может спровоцировать нарушения работы печени, почек, ЖКТ.

Гипотермия

У птиц высокий метаболизм высокая температура тела, и поэтому быстрый метаболизм и медикаментов. Птицы намного меньше, чем млекопитающие, могут поддерживать температу тела, и поэтому страдают от быстрых перемен температуры во время наркоза. Потеря тепла может повлиять на выживание. Птицы становятся гипогликемиками, пытаясь повысить температуру тела. Несмотря на источники тепла, температура тела понижается. Согревание уменьшает скорость потери тепла, особенно при длительном периоде.

Не нашли, что искали? Воспользуйтесь поиском по сайту: